lipofectamine 3000 培地交換

÷t¸`§İ¶ÒÉ_¾—©+�j»”ÔËÔ•N†ë%ÖÉÔ•}èv2G|Ù…:Ò£ó±–ş³X�ÛñÓùÏÀ†¤³3ª>bøìÁ6�»Hf¥óëÅWæëó_¡ÁJS|~¹øŠxáÉùâ7\²EØÉ°pâÁ ´ ©ŒÅÈ´÷ƒzÇ8«àf.L mñYÿ|¶¹ºRç7ëwŸş¹. それぞれの効果というか意味を教えてください。

よろしくお願いいたします。, L-グルタミンについては、 ただ、水関係の装置は日頃のメンテナンスが重要でイオン交換樹脂とか水を貯めるタンク、蛇口に汚染がないかは確認する必要があります。 ボリュームアップすればいいのでしょうが、どうも貧乏性で。 培養ボリュームの違いによる結果の違いについて、同じような経験をされた方、聞いたことがある方、何かご存知でしたら教えてください。, 回答ありがとうございます。 蒸留法は水を蒸留することで不純物を除く方法です。イオン交換法と組み合わせて2回蒸留することが一般的です。一般的な2次蒸留水の比抵抗は数MΩ・cmでバイオ・生化学関係には十分な純度です。動物培養細胞にも使用可能です。エンドトキシンも完全にフリーとまではいかないけれどもある程度の除去はできています。蒸留法は多くの不純物を除去可能ですが100度付近の沸点を持つ物質は除けません。 http://www.summitpharma.co.jp/japanese/service/s_ATCC_faq_cell_biology.html#q8 培地を加えて剥がし、ピペッティングして細胞数を計測、 100mm dishに1×10の5乗 cells/ml で播き込み、

http://us.expasy.org/tools/pi_tool.html 培地を加えて剥がし、ピペッティングして細胞数...続きを読む, 結論から言って技術不足です。継代の仕方事態にそれほど問題はなさそうですが、トリプシン処理中の操作とハーベストの時に問題がありそうです。 リポフェクタミンと核酸の複合体を形成させるときに、様々な成分が邪魔をするらしく(イオン的な要因だとか・・・)、 >動物細胞培養用に使う場合はどの水を選べばよいのでしょうか? 複合体の形成をopti-menで行えば、あとはDMEM血清含有で良いみたいです。 おっしゃるようにHepG2ではどうなのか観察が必要ですね。 opti-memとDMEMの違いは何なのでしょうか?

Transfection Amounts Transfection of siRNA. あと以外と...続きを読む, アンピシリンの失活温度について教えてください。

あまり細胞濃度がうすくならないように数に応じて、小さいプレートやウエルにまきなおします(~30%密度くらい)。細胞が一部伸展していることを確認し、時間が許すならひたすら待ちます。, 卒業研究の実験で、ヒト肝ガン由来細胞株HepG2を扱うことになり、最近培養のトレーニングを始めました。 これに関しては上で書いたように限外濾過膜で精製した水です。MilliQが当てはまるでしょう。(超純水も一般的には限外濾過をしているのでこれも当てはまりますかね。)

・グルコース そのあたりの増殖スピードや形態(顔つき?)の変化を観察するが不慣れなためかどうも私には難しいのですが。 培地はDMEM(high glucose)、継代の時はPBS-EDTAを使用し、37℃,5% CO2のインキュベーターで培養しています。, 培地を死んでいると思われる浮遊細胞と一緒に除きます。 しかし、継代する際にトリプシンで剥がすと、どうしても凝集してしまい、新しいdishに播いても凝集した細胞が目立ちます。今自分がやっている操作は下の通りです。 インビトロジェン社の形質転換試薬(リポフェクタミンなど)に最適された培地です。 To transfect cells with siRNA, follow the protocol as described for DNA but . 参考URL:http://www.summitpharma.co.jp/japanese/service/s_ATCC_faq_cell_biology.html#q8, エクセルの統計関数で標準偏差を求める時、STDEVとSTDEVPがあります。両者の違いが良くわかりません。 細胞をハーベストする時は勢いよく一気にメディウムをかけます。フラスコではなくディッシュなのでメディウムが飛び出さない程度に強さ加減してください。ピペッティングも細胞にダメージを与えるので極力少なくしいます。私の場合はハーベスト時のピペッテティングは3回以内です。 最終的にはどの培地にも添加されます。

できれば96穴プレートで進めたいのですか。, なるほど、まき直すとは思いつきませんでした。 4. 翌日(Day1)に培地交換を行い、培地を回収し、フィルターで濾過し、4℃に保存する。 6. 「培地にL-glutaminの添加は必要ですか?どの程度のL-glutaminを添加したらよいですか?なぜ information sheetにL-glutaminの記載がないのですか?」 ただ、合成したsiRNAをトランスフェクションしているだけなので、その抑制効果がいつまでもつのかが心配です。トランスフェクション後に薬剤耐性を見たいので、まき直したりしても大丈夫なのか。

を見て頂けると良いと思います。 お礼遅くなりすみません。 細胞のまき方、確かに意外と難しいです。 細胞をハーベストする時は勢いよく一気にメディウムをかけます。フラスコではなくディッシュなのでメディウムが飛び出さない程度に強さ加減...続きを読む, 接着性の細胞を液体培地で培養していますが、コンタミして困っています。 バイオ・生化学関係に用いられる水は水道水をプレフィルターを通し、イオン交換・蒸留・逆浸透法、限外濾過などを複数回組み合わせて生成します。 参考にさせていただきます。 ちなみに失礼ですがkumanokophooさんは培養を始めて間もなかったリするでしょうか?始めのうちは気をつけているつもりでも、どうしてもコンタミの洗礼を受けてしまいます。でもしばらくすると慣れてきて失敗しなくなりますよ。, まず下でfujishiroさんがおっしゃっている通り、培養液がコンタミしていないかを調べてみるべきだと思われます。冷蔵庫に入れてあると菌が繁殖しづらく、確認しづらいので、一日、室温に置いておきます。翌日、ビンを振ってみて白いものがユラユラとしていたらコンタミってことになります。 ・L-グルタミン 僕は使用する器具・試薬はすべて乾熱滅菌・オートクレーブ・ろ過滅菌を行っています。そして、たとえエタノール消毒していたとしても「手が触ったところは菌が付いている」と思ってそれらを使用しています。

水道水、脱イオン水、MilliQ、蒸留水(二段蒸留水)、超純水の違いを教えて下さい。 逆浸透法は半透膜に圧力をかけて精製する方法です。 B. プレフィルターは鉄さびや大き目のゴミを取り除くに用います。 それとも、私が凝集させてしまうのは、単に技術的な問題でしょうか?慣れてくればバラバラにできるようになるのでしょうか?

よろしくお願いします, アミノ酸配列データがあるなら、計算してくれるソフトウェアがあります。市販の遺伝子解析ソフトウェアには必ずついている機能ですが、ウェブ上でできるサイトもあります。たとえば

実験では、培地に食品成分を添加し、細胞の脂質合成へ与える影響を調べるのですが、凝集したままの細胞を使用すると細胞が十分に食品成分を取り込めないのではないのか、という不安があります。 トリプシン処理中に1分ごとに観察しているとありますが、その時の操作は慎重にトリプシン液を大きく揺らさないようにしていますか?液が揺れると特にディッシュの周りから細胞がシート状にはがれて凝集しやすくなります。 細胞が凝集しないように継代する方法はありますか?

あと以外と気が付かないところが原因だったりします。例えば誰かがピペット操作のときにニップルまで培養液を吸い上げてしまったのに、それに気づかず放置。後の人がそれを使ってコンタミだらけ・・・なんてこともあると聞きます。 分からなくて困っています 僕は使用する器具・試薬はすべて乾熱滅菌・オートクレーブ・ろ過滅菌を行っています。そして、たとえエタノール消毒していたとしても「手が触ったところは菌が付いている」と思ってそれらを使用しています。 先輩のプロトコールで問題がないのでしたら、それに従ってください。 ちなみに培地は低グルコース濃度のDME培地(serum +)です。 イオン交換法は酸性・強アルカリ性の樹脂を通し、イオン化合物を除く方法でこれを行った水がイオン交換水(脱イオン水)です。水の純度の評価には比抵抗を用いますが、およそ数百kΩ・cmの水が得られます。この段階で除けるのはイオン化合物だけで有機物・微生物は除けません。 ヒトの培養細胞を使ってsiRNA実験(メーカーによりすでに効果が確認されているコントロールsiRNA)を行っているのですが、96穴プレートでは効果が低い(40~50%減)のですが、48穴プレートでは効果が高い(70~80%減)傾向があります。おそらくトランスフェクション効率の問題だと思うのですが、培養ボリュームによって差が出ることってあるのでしょうか。培地、試薬、細胞数は同じロットのものをウェルの培養面積の変化と同じ割合で量を変えています。プレートのメーカーは違うのですが表面加工は同じです。トランスフェクション後48時間で見てます。細胞はHepG2です。そんなに使いにくい細胞ではないと思うのですが。 培養容器は、フラスコです。インキュベーター内では、キャップを緩めて細胞が呼吸できるようにしています。

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